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偽狂犬病毒通用型(PRV-gB)核酸檢測試劑盒說明書

發(fā)布時間:2024/11/25      點擊次數(shù):403

【產(chǎn)品名稱】

通用名稱:偽狂犬病毒通用型(PRV-gB)核酸檢測試劑盒(熒光-PCR 法)

Name :Pseudorabies Virus gB gene Detection Kit (Real-Time PCR Method)

【包裝規(guī)格】50T/盒

【預(yù)期用途】

偽狂犬病病毒(Pseudorabies virus,PRV)又稱豬皰疹病毒Ⅰ型、傳染性延髓麻痹病毒、奇癢癥病毒、奧葉茲基氏病病毒。是引起牛、羊、豬、犬和貓等多種家畜和野生動物發(fā)熱、奇癢(豬除外)及腦脊髓炎為主要癥狀的皰疹病毒。豬是偽狂犬病的唯-一自然宿主,對其危害大??芍氯焉锬肛i流產(chǎn),產(chǎn)死胎及胎兒干尸化。對初生仔豬則引起神經(jīng)癥狀,出現(xiàn)運動失調(diào),麻痹,衰竭死亡,病死率 100%。成年豬多呈隱性感染,但可引起呼吸道癥狀。病豬、帶毒豬及帶毒鼠類是本病的主要傳染源,病毒主要從病豬的鼻分泌物、唾液、乳汁和尿中排除,有的帶毒豬可持續(xù)排毒一年。

本試劑盒利用實時熒光 PCR 原理,檢測偽狂犬病毒,對偽狂犬病毒引起的疾病及其并發(fā)癥的診斷及療效評估有重要指導(dǎo)義。

【檢驗原理】

本試劑盒針對偽狂犬病毒gB基因高度保守區(qū)基因序列設(shè)計特異性引物和熒光探針。在反應(yīng)體系中含偽狂犬病毒gB基因組模板的情況下,PCR反應(yīng)得以進行并釋放   熒光信號。利用熒光定量PCR儀對PCR過程中相應(yīng)通道的信號強度進行實時監(jiān)測和輸出,實現(xiàn)檢測結(jié)果的定性、定量分析。

【試劑組成】

規(guī)

核酸提取液1.5mL×2 管

酶液50μL×1 管

PRV-gB 反應(yīng)液1.0mL×1 管

PRV-gB 陽性質(zhì)控品50μL ×1 管

陰性質(zhì)控品250μL ×1 管

注:

1)不同批號試劑不能混用。

2)試劑盒內(nèi)各試劑組份足夠包裝規(guī)格所標示的檢測次數(shù)。

【儲存條件及有效期】

-20℃±5℃,避光保存、運輸、反復(fù)凍融次數(shù)丌超過 5 次,有效期 12 個月。

【適用儀器】

ABI 、安捷倫 MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、Eppendorf 等系列熒光定量 PCR 檢測儀。

【標本采集】

病死或撲殺的豬,取腦、淋巴結(jié)、脾臟、肺臟等組織;待檢活豬,用棉拭子取鼻腔分泌物、唾液、乳汁等,置于 50%甘油生理鹽水中,或用注射器取血 5mL。

【保存和運輸】

上述標本短期內(nèi)可保存于-20℃,長期保存可置-70℃,但丌能超過 6 個月,標本運送應(yīng)采用 2~8℃冰袋運輸,嚴禁反復(fù)凍融。

【使用方法】

1.樣品處理(樣本處理區(qū))

1.1樣本前處理

組織樣品:每份組織分別從 3 個丌同的位置稱取樣品約 1g,手術(shù)剪剪碎混勻后取

0. 5g 于研磨器中研磨,加入 1.5mL 生理鹽水后繼續(xù)研磨,待勻漿后轉(zhuǎn)至 1.5mL 滅菌離心管中,8000rpm 離心 2min,取上清液 100μL 于 1.5mL 滅菌離心管中;分泌物棉拭子直接取 100μL 提??;血液取血清 100μL 提取。

1.2DNA 提取

1)對上述處理好的標本加入 50μL 核酸提取液,100℃恒溫處理 10min,13,000

rpm 離心 5min,取上清液轉(zhuǎn)移至新的 1.5mL EP 管,-20℃保存;

2)DNA 的提取也可以采用公司生產(chǎn)的 DNA 提取試劑盒

(離心柱提取法),請按照試劑盒說明書進行操作。

2.試劑配制(試劑準備區(qū))

根據(jù)待檢測樣本總數(shù),設(shè)所需要的 PCR 反應(yīng)管管數(shù)為 N(N=樣本數(shù)+1 管陰性對照+1 管陽性對照;樣本總數(shù)每滿 7 份,則多配制 1 頭份 PCR 反應(yīng)液),單個測試反應(yīng)液體系配制如下表:

試劑PRV-gB 反應(yīng)液酶液

用量(樣本數(shù)為 N)20μL1μL

將混合好的測試反應(yīng)液分裝到 PCR 反應(yīng)管中,21uL/管。

3.加樣(樣本處理區(qū))

將步驟 1 提取的 DNA、陽性質(zhì)控品、陰性質(zhì)控品各取 4μL,分別加入相應(yīng)的反應(yīng)管中,蓋好管蓋,混勻,短暫離心。

4.PCR 擴增(核酸擴增區(qū))

4.1將待檢測反應(yīng)管置于熒光定量 PCR 儀反應(yīng)槽內(nèi);

4.2設(shè)置好通道、樣品信息,反應(yīng)體系設(shè)置為 25μL;

熒光通道選擇: 檢測通道(Reporter Dye)FAM, 淬滅通道(Quencher Dye)

NONE,ABI 系列儀器請勿選擇 ROX 參比熒光,選擇 None 即可。

4.3推薦循環(huán)參數(shù)設(shè)置:

步驟循環(huán)數(shù)溫度時間收集熒光信號

11 cycle95℃10min

240 cycles94℃15sec

55℃30sec

5.結(jié)果分析判定

5.1結(jié)果分析條件設(shè)定

設(shè)置 Baseline 和 Threshold:一般直接按機器自動分析的結(jié)果分析,當曲線出現(xiàn)整體傾斜時,根據(jù)分析后圖像調(diào)節(jié) Baseline 的start 值(一般可在 3~15 范圍內(nèi)調(diào)節(jié))、

stop 值(一般可在 5~20 范圍內(nèi)調(diào)節(jié)),以及 Threshold 的 Value 值(上下拖動閾值線至高于陰性對照),重新分析結(jié)果。

5.2結(jié)果判斷

陽性:檢測通道 Ct 值≤35.0,丏明顯的擴增曲線。

可疑:檢測通道 Ct 值>35.0,丏出現(xiàn)明顯曲線的樣本建議重復(fù)試驗,重復(fù)試驗結(jié)果如果同樣出現(xiàn) Ct 值≤35.0 和明顯擴增曲線則為陽性,否則為陰性。

陰性:樣本檢測結(jié)果無 Ct 值丏無明顯的擴增曲線。

6.質(zhì)控標準

陰性對照:無明顯擴增曲線或無 Ct 值顯示;

陽性對照:擴增曲線有明顯指數(shù)生長期,丏 Ct 值≤32; 以上條件應(yīng)同時滿足,否則實驗視為無效。

7.檢測方法的局限性

7.1樣本檢測結(jié)果不樣本收集、處理、運送以及保存質(zhì)量有關(guān);

7.2樣本提取過程中沒有控制好交叉污染,會出現(xiàn)假陽性結(jié)果;

7.3陽性對照、擴增產(chǎn)物泄漏,會導(dǎo)致假陽性結(jié)果;

7.4病原體在流行過程中基因突變、重組,會導(dǎo)致假陰性結(jié)果;

7.5丌同的提取方法存在提取效率差異,會導(dǎo)致假陰性結(jié)果;

7.6試劑運輸,保存丌當或試劑配制丌準確引起的試劑檢測效能下降,出現(xiàn)假陰性或定量檢測丌準確的結(jié)果;

【注意事項】

1.所有操作嚴格按照說明書進行;

2.試劑盒內(nèi)各種組分使用前應(yīng)自然融化,完-全混勻并短暫離心;

3.反應(yīng)液應(yīng)避光保存;

4.反應(yīng)中盡量避免氣泡存在,管蓋需蓋緊;

5.使用一次性吸頭、一次性手套和各區(qū)與用工作服;

6.樣本處理、試劑配制、加樣需在不同區(qū)進行,以免交叉污染;

7.實驗完畢后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外燈處理工作臺和移液器;

8.試劑盒里所有物品應(yīng)視為污染物對待,并按照《微生物生物醫(yī)學(xué)實驗室生物安全通則》進行處理。

【參考文獻】

[1]婁高明,杜偉賢.偽狂犬病流行概況及豬場防制策略[J].中國動物檢疫,1999, 16(5):43-45.

[2]殷震,劉景華.動物病毒學(xué)[M].北京:科學(xué)出版社,1997.

[3]朱淑芬,朱瑞良,喬彩霞.檢測偽狂犬病毒gB基因熒光定量PCR方法的建立[J].中國獸醫(yī)學(xué)報,2012,32(10):1413-1417.


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